摘 要:为探讨茶叶中的重要活性成分茶多酚对皮肤角朊细胞的生长周期动力学和对细胞凋亡的影响,在原代培养大鼠皮肤角朊细胞基础上,根据培养基中乳酸脱氢酶释放情况确定的茶多酚浓度范围,采用细胞计数法和流式细胞仪研究角朊细胞的生长、周期动力学和凋亡发生率。结果发现,在一定浓度范围内(0.1~1.0g/L),茶多酚可以促进角朊细胞生长。在细胞周期动力学上,表现为促进细胞从G1期和静止期(G0)转向有丝分裂合成期S和G2/M期,增殖指数(PI)也从18.17%增至25.62%;同时细胞凋亡发生率从27.10%下降到17.97%。表明茶多酚可以促进皮肤角朊细胞有丝分裂和生长,减少细胞凋亡发生。
关键词:茶多酚 角朊细胞 皮肤 凋亡
分类号:S571.1 R739.5 R730.1 文献标识码:A
文章编号:1000-8020(2000)02-0094-03
Effects of tea polyphenols on cell kinetics and apoptosis
of primary cultured rat skin keratinocytes
Fu
Yicai Wei Shaomin Lin Huifen Zhang Ying,et al.
(Unit of Skin Physiology and Dermatotoxicology,
Preventive Medicine Institute,
Shanghai Medical University,
Shanghai 200032,China)
Abstract:In order to study the
effects of tea polyphenols on cell growth and apoptosis
of primary cultured rat skin keratinocytes,
the safe dosage of tea polyphenols was
determined by the release of lactate dehydrogenase(LDH).
Cell counting(cytometry) and flow cytometry(FCM) were
used to estimate the cell growth and the percentages
of cells in different cell cycle phases or apoptosis.
The results showed that tea polyphenols stimulated the
cell growth from G1/G0 to
G2/M phase, enhanced
the synthesis of DNA(increase S phase) and increased
the proliferative index(PI) from 18.17% to 25.62%. Also,
it could block the occurrence of apoptosis.
It is concluded that tea polyphenols could stimulate
the growth of skin keratinocytes through stimulating
the synthesis of cell DNA and inhibiting apoptosis.
Key words:tea polyphenols,
keratinocyte, skin, apoptosis
茶多酚是茶叶中的重要活性成分,由于其独特的生物学活性,越来越受到人们重视。许多研究表明茶多酚在体外可清除自由基和抗脂质过氧化,甚至可以增强小鼠的许多生理功能[1~3],其抑制肿瘤的作用也越来越受到广泛关注,抑制皮肤肿瘤发生的研究也日益深入[4~6]。另外,某些化妆品生产厂家试图利用茶多酚清除自由基和抗脂质过氧化等重要生物活性作用,将其添加到护肤品中以增加化妆品的功效和作用,并宣称添加了茶多酚的化妆品具有延缓皮肤衰老的作用[7],但是其确切效果尚缺乏科学实验的论证。
1 材料与方法
1.1 茶多酚
浙江大学食品科技系由绿茶分离与提纯,淡黄褐色,有效浓度>40%。用不含血清的DMEM培养基配成适当浓度,抽滤灭菌于4℃冰箱中保存待用。
1.2 皮肤角朊细胞的培养
根据Yin的方法稍加修改[8],取3日龄SD大鼠的背部皮肤,去除皮下脂肪,置4℃冰箱中半小时后加入0.25%胰酶(美国Dibco公司),于37℃恒温箱中热消化2小时。然后在4℃PBS中漂洗3次,用含15%小牛血清(NBS,华美公司)的DMEM培养液(美国Gibco公司)中和胰酶。分离表皮与真皮,将表皮层角朊细胞(基底细胞)刷下,并用10%的聚蔗糖(ficoll)(瑞典Pharmacia公司)进行密度梯度离心。计数细胞,用K-SFM培养基(美国Gibco公司)将细胞密度调整至1×106/ml,接种于35mm塑料培养皿(美国Corning公司)。12小时第1次换液,然后每2~3天换液。
1.3 角朊细胞胞浆乳酸脱氢酶(LDH)释放水平的测定
当上述培养细胞生长至70%融合时,加入茶多酚(不含NBS的DMEM配制)。根据LDH还原NAD的能力,于加样后12、24小时测定LDH[9],以选择可能具有促进角朊细胞生长的合适的茶多酚剂量范围。
1.4 细胞生长情况测定
当细胞生长接近融合状态时,去除培养液,用PBS洗涤。加入含0.01mol/L EDTA的胰酶(0.25%)1ml,37℃温箱中10分钟左右,当部分细胞脱落时,倾去胰酶,加入含15%NBS的培养液1.5ml,轻轻吹打,并将细胞团块打散。然后加入1滴0.4%台盼蓝(美国Chroma公司)染液,在细胞计数板上计数着色与未着色细胞。分别求出不同茶多酚浓度下细胞增殖分裂后引起的细胞增加百分数(与对照组相比的细胞增长百分数,定义为增长率)。
1.5 细胞周期动力学与细胞凋亡的测定
培养的角朊细胞加入茶多酚后24小时,用胰酶消化收集细胞。2×106个细胞用75%酒精固定,用0.1%
triton 100漂洗离心7分钟,沉淀物用0.1% RNase处理(37℃ 30分钟)。用0.05%碘化丙啶染色DNA,用EPICS
VI流式细胞仪测定DNA含量与分布[8],确定有丝分裂不同细胞周期(G1、S、G2、M)细胞的百分含量及细胞凋亡发生率。并计算出增殖指数(PI,可综合反映细胞的增殖分裂能力),PI=[(S+G2/M)/(G0/G1+S+G2/M)]×100%。
2 结 果
2.1 茶多酚对皮肤角朊细胞LDH释放的影响
分别在加入茶多酚后12和24小时,取细胞培养上清液0.5ml测定LDH。发现随着茶多酚浓度升高,LDH释放逐渐降低。茶多酚1
g/L时达到*低值;而浓度继续升高,LDH水平反而升高(表1)。
表1 茶多酚对培养的皮肤角朊细胞乳酸脱氢酶
释放水平的影响(±s,n=6)
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